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熒光原位雜交的染色體分析

點擊次數(shù):1979 更新時間:2016-02-24

熒光原位雜交的染色體分析

(一)標本的制備

1. 室溫下,依次用 70 %、 90 %和 100 %的乙醇脫水 5min 。

2. 空氣干燥載玻片。ELISA試劑盒

3. 若短期使用,載玻片可在室溫貯存數(shù)天。若載玻片要保存,應在室溫下過夜使組織“老化”( aged ),然后放入容器中,該容器密封于含干燥劑的塑料袋內(nèi),- 70 ℃保存。根據(jù)作者的經(jīng)驗, 6 個月內(nèi)使用的載玻片可貯存在- 20 ℃。在雜交實驗之前解凍這些載玻片,不提倡反復凍融載玻片。

(二)缺口平移法標記探針

通過缺口平移法(酰)化 DNA 探針

1. 結(jié)合: 2 μ g 探針 DNA , 10 μ l 10 ×反應緩沖液, 10 μ l β-巰基乙醇, 10 μ l 核苷酸母液( 0.5mmol/L dATP, 0.5mmol/L dCTP, 0.5mmol/L dGTP, 0.5mmol/L -16-dUTP 和 0.12mmol/L dTTP ), 20 單位 DNA 聚合酶 I 和 1 : 1000 稀釋的 DNase I ,加雙蒸水至 100 μ l (zui后加酶)。

2. 在 15 ℃溫育 2h 。

3. 置反應混合物于冰浴直至反應產(chǎn)物的大小被確定。

4. 凝膠電泳檢測探針分子的長度:取 10 μ l 反應混合物,加入凝膠上樣緩沖液,水浴箱中煮沸 2 3 分鐘使其變性,冰浴 3min ,上樣到 1 ~ 2 %的瓊脂糖微型凝膠中,并以適當大小的標準品做對照,以 50V/cm 電泳 3min 。用濃度為 0.5 μ g/ml 的溴化乙錠染膠,在紫外透照儀上顯示 DNA 并拍照。

5. 對于的雜交條件,探針(可見一脫尾)應為 100 ~ 500nt 。根據(jù)電泳結(jié)果進行下述步驟:

a. 如果探針大小在期望的范圍內(nèi),進行步驟 6 。

b.如果探針太大,可加入更多的 DNase I ,在 15 ℃溫育。

c.如果探針未*消化,純化探針并重復缺口平移法。

d. 如果探針太短,用較少的 DNase 重復反應。

6. 為使 DNase 失活,加入 2 μ l 0.5mol/L EDTA 和 1 μ l SDS ,在 68 ℃加熱 10min 。

7. 用離心柱凝膠過濾法從標記的探針中分離出未摻入的核苷酸:

a. 用 1ml 注射器裝入硅膠玻璃棉至 0.2ml 刻度處,加經(jīng)緩沖液平衡的 Sephadex G50 至 1ml 刻度處,將此柱置 15ml 的離心管內(nèi),室溫下, 3000r/min 離心 6min 。

b. 去除過柱后的液體,加入緩沖液重復離心直至柱內(nèi)容物緊密充填至 1ml 刻度處,加 100 μ l 柱緩沖液, 3000r/min 離心 6min ,重復洗滌步驟 3 次。在zui后一步洗滌后,確保流量與上樣緩沖液量相等,即 100 μ l 。

c. 探針溶液離心之前,放 1.5ml 的反應管在注射器下方的 15ml 管內(nèi),與前面步驟相同,加探針液到柱內(nèi)并離心,過柱后的液體收集在反應管中,這時已含有 20ng/ μ l 的標記探針。該探針已可用于原位雜交或貯存于- 20 ℃。

用缺口平移法進行標記

與缺口平移地化法幾乎相同,僅 10 ×寡核苷酸母液成分不同:

0.5mmol/L dATP, 0.5mmol/L dCTP, 0.5 mmol/L dGTP, 0.125 mmol/L  -11-dUTP , 0.375mmol/L dTTP 。

(三)斑點印跡分析法檢測標記物

1. 將分裝的 1 μ l 標準 DNA 稀釋液和同法配制的 1 μ l 待測 DNA 稀釋液點于硝酸纖維素膜上。

2. 硝酸纖維素膜置 80 ℃真空烤箱內(nèi) 1h 。

3. 室溫下,用 AP7.5 緩沖液漂洗硝酸纖維素膜 1min 。

4. 將硝酸纖維素膜密封于含 10ml 封閉液的塑料袋中,置 37 ℃溫育 30min 。

5. 打開塑料袋的一端,棄去封閉液,加入新鮮配制的鏈親和素 - 堿性磷酸酶交  聯(lián)物溶液,重封塑料袋口,置 37 ℃溫育 30min 。6. 從塑料袋中取出硝酸纖維膜,用 AP7.5 緩沖液漂洗(室溫下兩次各 5min ),再用 AP9.5 緩沖液漂洗(室溫下 10min )。

7. 將硝酸纖維素膜重封于含顯影液的塑料袋中( 33 μ l NBT 溶于 10ml AP9.5 緩沖液中)。小心混勻后(不可漩渦混勻?。┘尤?25 μ l BCIP ,再次輕輕混勻反應液,在 37 ℃溫育直至顯影達滿意程度,一般 15 ~ 60min 。

8. 從塑料袋中移去硝酸纖維膜,用 TE 緩沖液終止顯色反應。

9. 空氣干燥后,評估分析結(jié)果:測試組和對照組 DNA 的顏色密度應進行比較。在理想的雜交結(jié)果,zui低稀釋度信號應當是可見的。

(四)熒光標記原位雜交探針的混合與變性

1. 混合 20 ~ 60ng 單拷貝 DNA 和 3 ~ 5 μ g 經(jīng)剪切的鮭精 DNA (作為載體)。如果反應后體積少于 10 μ l ,可凍干;若體積較大,可加入 1/20 體積的 3mol/L 乙酸鈉和 2 倍體積 100% 乙醇使 DNA 沉淀?;靹虿⒅茫?70 ℃ 30min 。在 4 ℃用 Eppendorf 離心機以 12 000r/min 離心 10min ,棄上清,沉淀物以 500 μ l 70 %乙醇漂洗后再離心( 4 ℃, 12 000r/min, 10min ),棄上清并凍干。

2. 重懸于 5 μ l 去離子的甲酰胺中,于室溫漩渦混勻數(shù)分鐘。

3. 加 5 μ l 雜交緩沖液,漩渦混勻 5 ~ 10min 。

4. 在 75 ℃使 DNA 探針變性 5min ,接著冰浴 5min ,這時探針已可用于雜交。

(五)載玻片上 DNA 變性

變性

1. 在載玻片上選擇合適的雜交區(qū),用鉛石筆在載玻片的另一面作記號。ELISA試劑盒

2. 變性前將載玻片置 60 ℃烤箱孵育以防止變性液加至載玻片時溫度的降低。

3. 加變性液至 Coplin 廣口瓶內(nèi),在水浴箱中加熱至 70 ℃,用置于瓶內(nèi)的溫度計檢測變性液的溫度(這是關(guān)鍵步驟?。榈玫胶玫慕Y(jié)果,溫度應達 70 ℃。

4. 將預熱的載玻片(一次不多于 3 片)移至含變性液的 Coplin 廣口瓶內(nèi)準 2min 。

5. 立即將載玻片依次移入含 70 %、 90 %和 100 %乙醇(冰冷)的 Coplin 廣口瓶內(nèi),各 5min 。

6. 空氣干燥后,載玻片已可用于雜交。

雜交

1. 將 10 μ l 含變性探針的雜交混合物加至載玻片的變性靶 DNA 上。

2. 在雜交的液滴上小心地蓋上 18 × 18cm 的蓋玻片,不要滯留氣泡。

3. 用橡皮泥將蓋玻片四周封好,置載玻片于濕盒內(nèi), 37 ℃溫育過夜。

(六)檢測

1. 分別在 42 ℃和 60 ℃的水浴箱內(nèi)預熱漂洗液 A ( 50 %甲酰胺, 2 × SSC pH7.0 )和 B ( 1 × SSC ~ 0.1 × SSC pH7.0 )。

2. 從濕盒內(nèi)取出載玻片,用鑷子小心除去橡皮泥。

3. 置載玻片于含預熱至 42 ℃漂洗液 A 的 Coplin 廣口瓶中,在水浴箱中振蕩 10min 直至蓋玻片脫落,將載玻片移至另一含漂洗液 A 的廣口瓶中,振蕩 5min ,更換漂洗液 A 兩次,每次振蕩 5min 。

4. 將載玻片移入含預熱( 60 ℃)漂洗液 B 的 Coplin 廣口瓶中,漂洗 5min ,更換漂洗液兩次,每次漂洗 5min 。

5. 將載玻片從 Coplin 廣口瓶中取出,棄盡液體,加 200 μ l 封閉液,蓋以 22 × 40mm 的蓋玻片,置濕盒內(nèi), 37 ℃溫育至少 30min 。

6. 從每張載玻片上移去蓋玻片,去除過的的液體,加 200 μ l 帶熒光的報道分子檢測液(如 5 μ g/ml 與熒光素偶聯(lián)的親和素或 6 μ g/ml 與羅丹明偶聯(lián)的抗抗體),在 37 ℃濕盒內(nèi)溫育 30min 。所有的后序步驟均應在避光的 Coplin 廣口瓶中進行(如外裹錫箔紙)。

7. 移去蓋玻片,將載玻片移至漂洗液 C ( 4 × SSC , 0.1 % Tween20 pH7.0 )中,在 42 ℃(振蕩水浴箱)漂洗三次各 5min 。

8. 將載玻片置入含復染劑(如 2 × SSC , 200ng/ml DAPI )的 Coplin 廣口瓶中,室溫振蕩 20min 。

9. 將載玻片移至漂洗液 D ( 2 × SSC , 0.05 % Tween 20 )的 Coplin 廣口瓶中,室溫中溫育 1 ~ 2min 。

10. 從 Coplin 廣口瓶中取出載玻片,加 20 ~ 30 μ l 防退色液并蓋以 22 × 40mm 的蓋玻片,置載玻片于合適的盒內(nèi),以便 4 ℃保存。

(七)染色體原位抑制( CISS )雜交

1. 結(jié)合適量標記的探針 DNA ,人競爭 DNA ( Cot1 片段) 2 ~ 4 μ g ,加鮭精 DNA 至總量為 10 μ g DNA 。

2. 加 1/20 體積乙酸鈉( pH5.2 )和 2 倍體積的乙醇使 DNA 沉淀,置- 70 ℃ 30min 。 12 000r/min 離心 10 分鐘后,大多數(shù)可見沉淀。棄上清并用 70 %乙醇漂洗,再離心棄上清。

3. 凍干樣本,重溶于 5 μ l 去離子甲酰胺中。

4. 加 5 μ l 變性緩沖液。

5. 在 75 ℃溫育 5min 使 DNA 變性。

6. 迅速將含探針溶液的微量離心管移至 37 ℃,溫育 5 ~ 20min (甚至更長)使部分 DNA 再退火。

7. 預退火的探針與變性 DNA 在載玻片上混勻。

8. 繼續(xù)進行(四,五,六)所述的步驟。

(八)信號放大

1. 小心地從載玻片上移去蓋玻片。

2. 將載玻片移至漂洗液 C ( 4 × SSC , 0.1 % Tween20 pH7.0 )中,在 42 ℃漂洗三次共 10min 。

3. 從 Coplin 廣口瓶中取出載玻片,吸去載玻片上的殘液,加 200 μ l 含 1 ~ 5 μ g/ml 化的抗親和素抗體的檢測緩沖液,覆以 22 × 40mm 的蓋玻片,置濕盒內(nèi)在 37 ℃溫育 30min 。

4. 在 42 ℃含漂洗液 C 的 Coplin 廣口瓶中漂洗載玻片三次各 5min 。

5. 從 Coplin 廣口瓶中取出載玻片,吸去載玻片上的殘液,加 200 μ l 含 5 μ g/ml 偶聯(lián)熒光染料的親和素檢測緩沖液。

6. 漂洗和染色體步驟見(六)。

(九)多色熒光標記原位雜交

1. 在 DNA 沉淀之前,采用幾種與不同報道分子結(jié)合的探針,而不是僅用一種探針。

2. 合適的報道分子結(jié)合物必須加到檢測緩沖液中(六)。每種報道分子結(jié)合物應與一種熒光染料結(jié)合,該染料在光譜上能與同一實驗所用的其它熒光染料相區(qū)別。ELISA試劑盒

 

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